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雙縮脲法蛋白含量檢測試劑盒的操作步驟!

更新時間:2018-01-02      瀏覽次數:2055

雙縮脲法蛋白含量檢測試劑盒的操作步驟!

注意:

正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定,確保蛋白濃度在 1~ 10mg/ml 范圍內。

測定意義:

樣品可溶性蛋白質含量常常用于酶活性計算。此外,可溶性蛋白質含量也用于食品等質量分 析。

測定原理:

強堿性溶液中,雙縮脲與 CuSO4 形成紫色絡合物;紫色絡合物顏色的深淺與蛋白質濃度成 正比,而與蛋白質分子量及氨基酸成分無關,故可用來測定蛋白質含量。

該方法測定范圍為 1~10mg 蛋白質,適用于蛋白質濃度高的樣品,尤其是動物材料。

自備儀器和用品:

離心機、可見分光光度計、移液器、1 mL 玻璃比色皿和蒸餾水。

試劑組成和配制

試劑一:液體×1 瓶,4℃保存。

標準品:液體×1 瓶,5 mg/mL,4℃保存。

樣品中可溶性蛋白質提取

1. 液體樣品:澄清無色液體樣品可以直接測定。

2. 組織樣品:按照組織質量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1mL 提取液(自備,根據需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水)) 冰浴勻漿,8000g,4℃離心 10min,取上清,即待測液。(動物樣品常常需要稀釋)

3. 細菌、真菌:按照細胞數量(104 個):提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建 議 500 萬細胞加入 1mL 提取液),冰浴超聲波破碎細胞(功率 300w,超聲 3 秒,間隔 7 秒,總時間 3min);然后 8000g,4℃,離心 10min,取上清置于冰上待測。

雙縮脲法蛋白含量檢測試劑盒的操作步驟!

測定操作

1. 分光光度計預熱 30 min,調節波長到 540 nm,蒸餾水調零。

2. 空白管:取 1 mL 玻璃比色皿,加入 200μL 蒸餾水,1000μL 試劑一,混勻后室溫靜置 15 min,于 540nm 比色,記為 A 空白管。

3. 標準管:取 1 mL 玻璃比色皿,加入 200μL 標準液,1000μL 試劑一,混勻后室溫靜置 15 min,于 540 nm 比色,記為 A 標準管。

4. 測定管:取 1 mL 玻璃比色皿,加入 200μL 待測液,1000μL 試劑一,混勻后室溫靜置 15 min,于 540nm 比色,記為 A 測定管。

注意:

空白管和標準管只需測定一次。 樣品中蛋白質濃度計算公式 C 待測(mg/mL)= C 標準管×(A 測定管-A 空白管)÷(A 標準管-A 空白管) =5×(A 測定管-A 空白管)÷(A 標準管-A 空白管)

注意事項:

1.樣品蛋白濃度須在 1~10mg/ml 范圍內,低于 1mg/ml 不能用此法,高于 10mg/ml 須做相應 稀釋。因此測定前用 1~2 個樣做預實驗,確保蛋白濃度在 1~10mg/ml 范圍內。

2.待測樣品蛋白提取可用生理鹽水、雙蒸水或不含蛋白的 PBS 提取。該法受硫酸銨、Tris 緩 沖液干擾,提取液中應不含這些物質;否則改用 BCA 蛋白質含量測定試劑盒。

雙縮脲法蛋白含量檢測試劑盒的操作步驟!

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